Инфекции, вызваные ACINETOBACTER BAUMANNII: факторы риска, диагностика, лечение, подходы к профилактике. Acinetobacter: характеристика, патогенность, симптоматика, диагностика, лечение Acinetobacter baumannii в гайморовой пазухе

- вид грамотрицательных споронеобразующих неферментирующих строго аэробных бактерий.

Широко распространены в природе, а также во внутрибольничной среде и обладают множественными механизмами резистентности к антибиотикам. могут колонизировать желудочно-кишечный тракт , кожу пациента, рото- и носоглотку, конъюнктиву, влагалище и уретру.

В то же время могут являться причиной пневмонии, трахеобронхита, сепсиса, инфекций мочевыводящих путей, эндокардита, раневой и хирургической инфекции, инфекций кожи и мягких тканей (включая некротизирующий фасциит), менингита, вентрикулита, абсцессов мозга, интраабдоминальных абсцессов, хориоамнионита, остеомиелита, артрита, синусита и перитонита .

Acinetobacter baumannii - возбудитель внутрибольничных инфекций

Вызывает 2-10 % всех грамотрицательных инфекций в Европе и США и до 1% всех внутрибольничных инфекций. В России , наряду с Pseudomonas aeruginosa и Klebsiella pneumoniae , относится к трём самым часто происходящим и опасным возбудителям нозокомиальных инфекций. Во внутрибольничных условиях вспышки инфекций, вызываемые в 60% случаев происходят во «взрослых» отделениях реанимации и интенсивной терапии. Оставшиеся 40% приходятся на отделения реанимации и интенсивной терапии новорожденных, ожоговые, нейрохирургические, хирургические, онкологические и гематологические отделения. Способствующими факторами являются: организация работы в этих отделениях – широкое использование инвазивных диагностических и лечебных мероприятий (катетеризация магистральных сосудов, искусственная вентиляция лёгких, длительная инфузионная терапия, энтеральное питание, методы внепочечного очищения крови), высокая концентрация больных с тяжелыми заболеваниями и сниженной иммунологической защитой, широкое и часто нерациональное использование антибактериальных и кортикостероидных препаратов, цитостатиков. в большинстве случаев вызывает заболевания у тяжелобольных иммуноскомпрометированных пациентов (Ю.Л. Горбич, И.А. Карпов, 2012).

Относится к основными возбудителями раневых инфекций (Д.О. Вагнер).

Acinetobacter baumannii в систематике бактерий

Антибиотики, активные в отношении Acinetobacter baumannii

По данным отечественного проекта «РЕЗОРТ», наибольшую активность в отношении 459 протестированных нозокомиальных штаммов проявляли цефоперазон/сульбактам, имипенем и меропенем (2,2, 2,2 и 3,5% устойчивых изолятов соответственно), наименьшую – цефоперазон, гентамицин и пиперациллин (97,8, 89,1 и 91,7% соответственно) (Козлов С.Н., Белькова Ю.А.).

Из представленных в данном справочнике антимикробных средств в отношении (в общем) активны.

Нозокомиальные инфекции. Общая характеристика. Результаты проведенных исследований.

Горбич Ю.Л., Карпов И.А., Кречикова О.И.

Белорусский государственный медицинский университет, Республика Беларусь.

НИИ антимикробной химиотерапии Смоленской государственной медицинской академии, Российская Фе-дерация.

Нозокомиальные инфекции (лат. nosocomium – больница, греч. nosocmeo – больница, ухаживать за больным) – это инфекции, развившиеся у пациента не менее чем через 48 ч после госпитализации, при условии что при поступлении в стационар инфек-ция не существовала и не находилась в инкубаци-онном периоде; инфекции, явившееся следствием предыдущей госпитализации, а также инфекцион-ные заболевания медицинских работников, связан-ные с их профессиональной деятельностью.

По данным различных авторов, число пациентов, у которых развиваются нозокомиальные инфекции, колеблется от 3 до 15% . Из них 90% имеют бактериальное происхождение; вирусные, грибко-вые возбудители и простейшие встречаются значи-тельно реже .

С начала эры антибиотиков и до 60-х годов ХХ в. примерно 65% внутрибольничных инфекций (ВБИ) имели стафилококковую природу. С появлением в арсенале врачей пенициллиназостабильных анти-бактериальных препаратов они отступили на вто-рой план, уступив лидерство инфекциям, вызван-ным грамотрицательными бактериями .

В настоящее время, несмотря на несколько воз-росшую этиологическую роль грамположительных микроорганизмов и грибов как возбудителей нозо-комиальных инфекций, штаммы грамотрицатель-ных микроорганизмов со множественной рези-стентностью к антибактериальным препаратам представляют серьезную проблему в стационарах различных стран мира . По данным ряда авто-ров, их частота варьируется от 62 до 72% всех но-зокомиальных инфекций . Наиболее актуаль-ными возбудителями всех ВБИ (кроме ангиогенных) и сепсиса являются микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae и неферментирующие бактерии, к которым относятся Pseudomonasaeruginosa и Acinetobacterspp. .

Наиболее клинически значимым видом рода Acinetobacter является Acinetobacter baumannii (ге-номовид 2) , который вызывает 2–10% грамотри-цательных инфекций в Европе и США , до 1% всех нозокомиальных инфекций .

Факторы риска

В качестве общих факторов риска инфекций, вы-званных A. baumannii, выделяют:

•  мужской пол;

•  пожилой возраст;

•  наличие сопутствующих заболеваний (злокаче-ственные заболевания крови, сердечно-сосудистая или дыхательная недостаточность, диссеминированное внутрисосудистое сверты-вание крови);

•  длительность использования инвазивных ме-тодов лечения и мониторинга (ИВЛ более 3 дней; ингаляционное введение лекарственных препаратов; введение назогастрального зонда; трахео-стомия; катетеризация мочевого пузы-ря, центральной вены, артерии, оперативное вмешательство);

•  длительное нахождения в стационаре или от-делении реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ);

•  предшествующая антибактериальная терапия с использованием цефалоспоринов, фторхино-лонов или карбапенемов .

Предшествующее госпитализации в ОРИТ хирурги-ческое вмешательство повышает риск инфициро-вания примерно в 5 раз .

В качестве факторов риска инфицирования кар-бапенемрезистентным штаммом A. baumannii для взрослых к настоящему моменту описаны: большой размер стационара (более 500 ко-ек); госпитализация в ОРИТ или госпитализация по экстренным показаниям; длительное пребывание в

стационаре; высокая плотность пациентов с CRAB в палате; мужской пол; иммуносупрессия; ИВЛ, ка-тетеризация мочевыводящих путей или артерии, проведение гемодиализа; недавнее оперативное вмешательство; пульс-лаваж ран; предшествую-щее использование меропенема, имипенема или цефтазидима .

В Республике Беларусь в качестве факторов риска колонизации/инфицирования нозокомиальным изо-лятом Acinetobacter baumannii, устойчивым к кар-бапенемным антибиотикам, были выделены пред-шествующее использование «антисинегнойных» карбапенемов, катетеризация мочевыводящих пу-тей, госпитализация в отделение нетерапевтиче-ского профиля и возраст до 40 лет (табл. 1).

Ацинетобактерассоциированные инфекции

A. baumannii в большинстве случаев вызывает за-болевания у тяжелобольных иммуноскомпромети-рованных пациентов. Данный микроорганизм может являться причиной инфекций дыхательных путей (синусит, трахео-бронхит, пневмония), кровотока (сепсис, эндокар-дит естественных и искусственных клапанов), мо-чевыводящих путей, раневой и хирургической ин-фекций, инфекций кожи и мягких тканей (включая некротизирующий фасциит), нервной системы (ме-нингит, вентрикулит, абсцесс мозга), интраабдоми-нальных (абсцессы различной локализации, пери-тонит), опорно-двигательного аппарата (остеомие-лит, артрит) .

По данным собственных исследований, проведен-ных в 15 больничных организациях здравоохране-ния г. Минска, в структуре A. baumannii-ассоциированных инфекций превалируют инфек-ции кровотока, составляя 39,4% от всех инфекций, вызванных данным возбудителем. Второе место занимают инфекции дыхательных путей (35,4%), третье (19,7%) – инфекции кожи и мягких тканей (включая инфекции хирургической раны). Остеоми-елиты наблюдались в 4,7% случаев, инфекции мо-чевыводящих путей – 0,8% случаев.

Инфекции кровотока. Клинические проявления инфекций кровотока, вызванных A. baumannii, ва-рьируются от транзиторной бактериемии до крайне тяжелого заболевания с высоким уровнем смерт-ности . Воротами инфекции чаще всего являют-ся дыхательные пути, однако при первичном разви-тии септического процесса основную роль играют внутрисосудистые катетеры . Реже входны-ми воротами служат мочевыводящие пути, кожа и мягкие ткани, ожоговые раны, органы брюшной по-лости и центральная нервная система . Внутри-больничный сепсис, вызванный A. baumannii, в 73% случаев развивается после 15-го дня госпитализа-ции . Септический шок развивается примерно у 30% пациентов с ацинетобактерассоциированным сепсисом . В то же время, больные с бактерие-мией, связанной с внутрисосудистыми катетерами,

характеризуются лучшим прогнозом, предположи-тельно потому, что источник инфекции может быть элиминирован из организма при удалении катетера .

Факторами риска развития инфекций кровотока, вызванных A. baumannii, являются экстренная гос-питализация, длительное пребывание в стациона-ре, предшествующая колонизация ацинетобактери-ями, высокий коэффициент инвазивных процедур, проведение ИВЛ, пожилой возраст или возраст ме-нее 7 дней, вес менее 1500 г (для новорожденных), иммуносупрессия, злокачественные заболевания, сердечно-сосудистая недостаточность, почечная недостаточность, дыхательная недостаточность во время поступления в ОРИТ, наличие в анамнезе эпизода сепсиса, развившегося в ОРИТ, предше-ствующая антибактериальная терапия (особенно цефтазидим или имипенем) .

Инфекции дыхательных путей. A. baumannii, наряду с Pseudomonas aeruginosa, Stenotrophomonasmaltophilia и MRSA, является воз-будителем поздних (развивающихся позже 5 дней с момента госпитализации) эпизодов нозокомиаль-ной пневмонии. Кроме времени манифестации ин-фекции имеют значение также предшествующая антибактериальная терапия и госпитализация в те-чение последних 60 дней .

Нозокомиальные ацинетобактерассоциированные пневмонии чаще всего полисегментарные. Может наблюдаться формирование полостей в легких, плевральный выпот, образование бронхоплевраль-ной фистулы .

Независимыми факторами риска развития ВАП, вызванной A. baumannii, являются предшествую-щая антибактериальная терапия и наличие острого респираторного дистресс-синдрома . Предшествующий эпизод сепсиса, использование антибактериальных препаратов до развития ин-фекции (особенно имипенема, фторхинолонов и цефалоспоринов III поколения, пиперацилли-на/тазобактама), продолжительность ИВЛ более 7 дней, реинтубация, длительность пребывания в стационаре определены в качестве факторов риска развития ВАП, вызванной мультирезистентным штаммом A. baumannii .

A. baumannii является третьей по частоте причиной нозокомиального трахеобронхита (НТБ) у пациен-тов на ИВЛ, обуславливая 13,6 и 26,5% случаев НТБ у пациентов с хирургической и терапевтиче-ской патологией соответственно. Развитие НТБ до-стоверно приводило к увеличению срока пребыва-ния в ОРИТ и продолжительности проведения ИВЛ даже в случаях, если у пациентов впо-следствии не развивалась нозокомиальная пневмония.

Инфекции кожи и мягких тканей. A. baumannii яв-ляется значимым патогеном при травматических повреждениях, ожогах, а также в отношении ин-фекционных осложнений послеоперационных ран . Инфекции кожи и мягких тканей, вы-званные A. baumannii, в большинстве случаев осложняются бактериемией .

Ацинетобактерии способны вызывать инфекции подкожной жировой клетчатки в месте постановки внутривенного катетера, разрешения которых мож-но достичь только после его удаления .

Инфекции нервной системы. Acinetobacter baumannii способен вызывать внутрибольничные менингиты, абсцессы головного мозга . Ме-нингит может развиться остро или иметь по-степенное начало. На кожных покровах может наблюдаться петехиальная сыпь (до 30% случаев) . Изменения спинномозговой жидкости при ме-нингите, вызванном A. baumannii, не отличаются от соответствующих изменений при менингитах дру-гой этиологии и представлены: плейоцитозом с преобладанием нейтрофилов, увеличением уровня белка и молочной кислоты, снижением уровня глю-козы .

Факторы риска развития ацинетобактерного менин-гита включают: экстренное нейрохирургическое вмешательство, наружную вентрикулостомию (осо-бенно проводимую ³5 дней), наличие цереброспи-нальной фистулы, нерациональное использование антибактериальных препаратов в нейрохирургиче-ских ОРИТ .

Инфекции мочевыводящих путей (ИМП). Не-смотря на частую колонизацию нижних отделов мо-чевыводящих путей ацинетобактерии редко явля-ются этиологическим агентом ИМП . Acinetobacter spp. выделяются в 1–4,6% случаев нозокомиальных ИМП .

Факторами риска ацинетобактерассоциированных ИМП являются наличие катетера в мочевом пузыре и нефролитиаз .

Другие инфекции. Ацинетобактерии вызывают пе-ритонит у пациентов, находящихся на длительном амбулаторном перитонеальном диализе; а также холангит на фоне чреспеченочной холангиографии или дренирования желчевыводящих путей . Остеомиелиты и артриты, вызванные A. baumannii, связаны с внедрением искусственных имплантатов или травмой . Описаны также ацинетобактерас-социированные поражения глаз, связанные с кон-таминацией мягких контактных линз (изъязвление и прободение роговицы). Возможно развитие других поражений органа зрения от конъюнктивита до эн-дофтальмита .

Диагностика и определение чувствительности к антимикробным препаратам

В клинической практике инфекции, вызванной A. baumannii, предшествует колонизация кожных покровов, дыхательных и мочевыводящих путей, желудочно-кишечного тракта пациентов . Значительное распространение A. baumannii как колонизирующего микроорганизма требует объективной оценки ситуации при выделе-нии из биологического материала пациента . В то же время, следует отметить, что выделение Acinetobacterspp. в качестве колонизирующего мик-роорганизма является прогностически значимым для определения этиологии последующей нозоко-миальной инфекции (положитель-ная/отрицательная предиктивная ценность – 94/73% для ВАП, 43/100% для инфекций кровотока соответственно) .

Диагностика нозокомиальной инфекции, в т.ч. A. baumannii-ассоциированной, с клинических пози-ций условно подразделяется на 4 этапа:

• 1. Забор и транспортировка клинического мате-риала.

• 2. Идентификация возбудителя.

• 3. Определение этиологической значимости вы-деленного микроорганизма.

• 4. Определение чувствительности к антимикроб-ным препаратам и интерпретация полученных результатов.

Правильный сбор и транспортировка клинического материала позволяют свести к минимуму вероят-ность недостоверных результатов лабораторных исследований, а следовательно, и уменьшить «не-адекватное» назначение антимикробных препара-тов.

Общие правила забора клинического материала на микробиологическое исследование ( с измене-ниями):

• 1. Забор, по возможности, необходимо проводить до начала антибактериальной терапии. Если больной уже получает антибактериальную те-рапию, то клинический материал следует брать непосредственно перед очередным введением препарата.

• 2. Материал для бактериологического исследова-ния необходимо забирать непосредственно из очага инфекции. При невозможности – исполь-зовать другой клинически значимый биологиче-ский материал.

• 3. Строго соблюдать правила асептики, не допус-кая контаминации материала посторонней мик-рофлорой.

• 4. Для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны. Для крови, гноя, ликвора и экссудатов – стерильные шприцы и специали-зированные транспортные среды; для мокроты, мочи, кала – стерильные плотно закрывающие-ся контейнеры.

• 5. Количество материала должно быть достаточ-ным для проведения исследования.

• 6. Нативный материал доставляют в лаборато-рию в максимально короткие сроки (не позднее 1,5–2 ч после их получения). Допускается хра-нение материала в холодильнике при 4 оС (кроме биологического материала, полученного из стерильных в норме локусов: ликвора, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости). При использовании транспортных сред клинический материал можно хранить в течение 24–48 ч.

• 7. Жидкий биологический материал можно транс-портировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла.

Идентификация возбудителя. Род Acinetobacter (семейство Moraxellaceae) состоит из строгих аэробных, неподвижных грамотрицательных лакто-занеферментирующих оксидазаотрицательных, ка-талазаположительных коккобактерий размером 1–1,5 х 1,5–2,5 мкм, окисляющих глюкозу до кислоты только в присутствии кислорода и способных расти на обычных питательных средах . На плотных питательных средах колонии

гладкие, непрозрачные, несколько меньшие по размерам, чем представители энтеробактерий.

Типичные морфологические формы эти микроорга-низмы имеют в мазках, сделанных из клинического материала или из жидких питательных сред. При росте на плотных средах в присутствии антибиоти-ков в мазках бактерии имеют форму палочек . Некоторые изоляты ацинетобактерий могут за-держивать кристаллический виолет, плохо обес-цвечиваясь при окраске по Граму, что приводит к их ошибочной интерпретации как грамположительных бактерий .

Трактовка результатов( с изменениями и до-полнениями). По глубокому убеждению авторов, достоверным критерием инфекции, связанной с условно-патогенной внутрибольничной микрофло-рой, в том числе и Acinetobacter baumannii, являет-ся выделение культуры из стерильного источника.

Кровь. Материал для исследования необходимо брать как минимум из двух периферических вен в разные флаконы. Не допускается взятие крови из венозного катетера за исключением случаев, когда имеется подозрение на катетерассоциированную инфекцию. При сравнении посевов двух порций крови, взятых из катетера и периферической вены и засеянных количественным методом, получение роста колоний из катетера, превышающего в 5–10 раз число идентичных колоний при посеве веноз-ной крови, свидетельствует о наличии инфекции, связанной с катетером.

Ликвор. Выделение A. baumannii в низких концен-трациях затрудняет интерпретацию результатов, особенно в отделениях, где этот микроорганизм часто колонизирует кожные покровы пациентов. Вероятность его этиологической значимости значи-тельно повышается в случае выделения ацинето-бактерий из ликвора у пациентов с уже имеющейся инфекцией, вызванной A. baumannii, вне централь-ной нервной системы (так называемый вторичный менингит), после проведения нейрохирургических вмешательств, у пациентов с проникающими по-вреждениями черепа, особенно на фоне имеющих-ся факторов риска ацинетобактерассоциированных инфекций.

Интерпретация клинического значения ацинетобак-терий, выделенных из нестерильных локусов, – многофакторный процесс, зависящий от квалифи-кации клинициста, микробиолога, специалиста за-биравшего материал, состояния пациента. Ниже-приведенные критерии в определенной мере явля-ются условными, но в то же время позволяют по-высить вероятность адекватной трактовки выде-ленного микроорганизма, как колонизирующего агента или возбудителя инфекции.

Мокрота. Выделение ацинетобактерий в количе-стве ³106 КОЕ/мл (из бронхиальных смывов ³104 КОЕ/мл) является диагностически значимым при условии соблюдения правил забора мокроты. Од-нако эти значения не являются абсолютными, так как на фоне антибактериальной терапии количе-ство причинно значимых бактерий в мокроте сни-жается и, наоборот, возрастает концентрация ко-лонизирующей микрофлоры.

При исследовании мокроты ее бактериоскопия яв-ляется обязательной, так как позволяет судить о качестве взятого материала. Наличие в одном поле зрения при малом увеличении более 10 эпители-альных клеток и/или менее 25 полиморфно-ядерных лейкоцитов указывает на контаминацию образца слюной, поэтому дальнейшее исследова-ние этого материала нецелесообразно. В таком случае мокроту следует взять повторно с соблюде-нием всех правил забора.

Материал при раневой инфекции. Следует ис-ключить возможную контаминацию исследуемого материала изолятами A. baumannii с поверхности кожи, особенно при использовании тампонов. При выделении смешанных культур, предпочтение сле-дует отдавать микроорганизмам, выделенным в большей концентрации.

Моча. Диагностически значимым является выделе-ние бактерий в концентрации ³105 КОЕ/мл при наличии симптомов заболевания. При взятии мочи из непосредственно мочевого пузыря без катетери-зации мочевыводящих путей выделение ацинето-бактерий в любом титре считается значимым. Наличие трех и более видов микроорганизмов в больших концентрациях указывает на контамина-цию во время сбора мочи или на ее неправильное хранение.

Дополнительным маркером этиологической значи-мости Acinetobacter baumannii является положи-тельная динамика общего состояния пациента на фоне противоацинетобактерной терапии .

Интерпретация антибиотикограммы ( с изменениями и дополнениями). После получения

результатов тестирования возбудителя на чувстви-тельность к антибактериальным препаратам, не следует назначать этиотропную терапию формали-зованно, опираясь лишь на показания антибиотико-граммы. Чувствительнось организма к тому или иному антимикробному препарату in vitro не всегда коррелирует с его активностью in vivo. Это может быть связано как с индивидуальными особенностя-ми фармакокинетики и/или фармакодинамики пре-парата у данного конкретного пациента, так и с по-грешностями в методике исследования, качеством используемых материалов и т.д.

При анализе антибиотикограммы следует обра-щать внимание не на какой-либо конкретный пре-парат(ы), к которому(ым) возбудитель чувствите-лен/резистентен, а на всю картину в целом. Это позволяет, сопоставив вероятный фенотип рези-стент-ности ацинетобактерий с фактическими дан-ными, скорректировать последние, избежав тем самым назначения малоэффективных препаратов.

В частности, для выявления штаммов, продуциру-ющих бета-лактамазы расширенного спектра дей-ствия (БЛРС) следует обращать внимание на чув-ствительность возбудителя к цефокситину и азт-реонаму. Если изолят продуцирует БЛРС цефокси-тин сохраняет активность, а азтреонам нет. В этом случае изолят необходимо расценивать, как рези-стентный ко всем цефалоспоринам I–IV поколения и азтреонаму вне зависимости от фактических ре-зультатов антибиотикограммы. Если штамм устой-чив к цефокситину, но чувствителен к азтреонаму, он является продуцентом хромосомных бета-лактамаз. В этом случае цефалоспорины IV поко-ления могут сохранять свою активность.

В случае определения чувствительности только к одному из «антисинегнойных» карбапенемов, не следует оценивать чувствительность остальных по аналогии с ним. Различные представители кар-бапенемов в неодинаковой степени подвержены действию того или иного механизма резистентно-сти. A. baumannii, резистентный, например, к меро-пенему, может сохранять чувствительность к ими-пенему и/или дорипенему и наоборот.

При обнаружении штамма, резистентного к коли-стину, необходимо с осторожностью относиться к такому результату и повторно определить чувстви-тельность с параллельным тестированием кон-трольных штаммов.

В отношении аминогликозидов интерпретационная оценка антибиотико-граммы крайне затруднительна ввиду большого количества аминогликозидмоди-фицирующих ферментов и вариабельности их суб-стратного профиля. Поэтому для аминогликозидов допустимы самые различные сочетания чувстви-тельности/резистентности внутри класса.

Большинство клинических изолятов A. baumannii резистентно к фторхинолонам и хлорамфениколу, поэтому необходимо с осторожностью подходить к выбору данных препаратов в качестве этиотропных для лечения ацинетобактерассоциированных ин-фекций, несмотря на результаты определения чув-ствительности к антибиотикам. Кроме того, оцени-вая чувствительность Acinetobacter baumannii к хи-нолонам, следует учитывать, тот факт, что для формирования резистентности к нефторированным хинолонам достаточно одной мутации в гене либо ДНК-гиразы (gyrA) либо топоизомеразы IV (parC). Для развития резистентности к фторхинолонам необходимы мутации в обоих генах. Поэтому при получении результатов антибиотикограммы, указы-вающих на чувствительность штамма к налидиксо-вой или пипемидовой кислоте при одновременной резистентности к фторированным хинолонам, сле-дует крайне скептически подходить к данной анти-биотикограмме в целом.

При интерпретации антибиотико-грамм также необ-ходимо учитывать, что Acinetobacterspp. в целом обладают природной резистентностью к цефалос-поринам I и II поколения, природным и аминопени-циллинам, триметоприму, фосфамицину.

Для характеристики резистентности Acinetobacter baumannii рекомендуется использовать следующие понятия :

•  резистентный (resistant) Acinetobacterbaumannii – нечувствительный к одному антимикробному препарату;

•  мультирезистентный (multidrug-resistant – MDR) Acinetobacterbaumannii – нечувствительный к ³1 препарату в ³3 классах, перечисленных в табл. 2;

•  экстенсивно резистентный (extensivelydrug-resistant – XDR) Acinetobacterbaumannii – не-чувствительный к ³1 препарату в ³8 классах, перечисленных в табл. 2;

•  панрезистентный (pandrug-resistant – PDR) Aci-netobacterbaumannii – нечув-ствительный ко

• всем перечисленным в табл. 2 антимикробным

• препаратам.

При анализе антибиотикограммы не менее важное значение, чем интерпретация качественных харак-теристик резистентности, имеет оценка минималь-ной подавляющей концентрации (МПК). В ряде случаев, особенно если микроорганизм является промежуточно-резистентным (т.е. значение МПК превышает порог чувствительности, но не достига-ет порогового значения резистентности), исходя из фармакокинетических особенностей препарата, возможно достижение концентрации препарата, превышающей МПК в очаге инфекции, при назна-чении максимальной дозы и/или использовании пролонгированного режима введения. В частности, по данным рандомизированных контролируемых исследований постоянная концентрация препарата, достигаемая в сыворотке при непрерывном введе-нии, в 5,8 раза превосходит минимальную концен-трацию, которая достигается при интермиттирую-щем режиме . А в исследовании D. Wang при сравнении использования меропенема в дозе 1 г каждые 8 часов внутривенно в течение одночасо-вой инфузии и в дозе 0,5 г каждые 6 часов в тече-нии трехчасовой инфузии при лечении вентилято-рассоциированной пневмонии, вызванной мульти-резистентными штаммами A. baumannii, было уста-новлено, что концентрация препарата в сыворотке крови превышала МПК в течение 54 и 75,3% вре-мени между введениями соответственно; стои-мость антибактериальной терапии достоверно бы-ла в 1,5 раза ниже во второй группе . В табл. 3 приведены критерии интерпретации чувствитель-ности по МПК и соответ-ствующие зоны задержки роста микроорганизмов на твердой питательной среде в соответствии с рекомендациями Европей-ской комиссии по определению чувствительности к антимикробным препаратам (The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing – EUCAST) .

Терапия нозокомиальных инфекций, вызванных Acinetobacter baumannii, проводится в соответствии с общими правилами ведения инфекций, ассоции-рованных с оказанием медицинской помощи (рис. 1). Эмпирическое назначение антиацинетобактер-ной терапии при подозрении на развитие нозоко-миальной инфекции оправдано в тех организациях здравоохранения или их структурных подразделе-ниях, где A. baumannii является одним из ведущих возбудителей данных инфекций, с учетом факторов риска.

Оценка эффективности проводимой терапии долж-на проводиться через 48–72 ч после ее начала вне зависимости от того, назначена была терапия эм-

пирически или после выделения возбудителя. Она должна базироваться на динамике клинической картины и результатах микробиологических иссле-дований (в том числе повторных), причем превали-рующим фактором для оценки должна служить клиническая картина.

Несмотря на ряд исследований, указывающих на возможность уменьшения длительности антибиоти-котерапии, не следует сокращать продолжитель-ность антимикробной терапии при инфекциях, вы-званных A. baumannii. Так в мультицентровом ран-домизированном исследовании было выявлено, что сокращение сроков антибактериальной терапии ВАП, вызванной неферментирующими грамотрица-тельными микроорганизмами, с 15 до 8 дней связа-но с возрастанием частоты рецидивов .

При выборе терапии следует учитывать, что во всем мире наиболее активными антибактериаль-ными препаратами в отношении A. baumannii яв-ляются сульбактам, карбапенемы, аминогликозиды, полимиксины, тайгециклин и миноциклин . Однако выбор конкретного антимикробного препа-рата, который может быть использован для эмпи-рической терапии A. baumannii-ассоциированных инфекций, должен основываться на локальных данных отделения или организации здравоохране-ния, где развилась нозокомиальная инфекция.

В том случае, если антимикробная терапия назна-чается после выделения ацинетобактерий из пато-логического материала, выбор антибиотика должен базироваться на антибиотикограмме, с учетом ин-терпретационного анализа ее результатов (раздел «Диагностика и определение чувствительности к антимикробным препаратам»).

Сульбактам. Сульбактам в настоящее время яв-ляется препаратом выбора для лечения ацинето-бактерассоциированных инфекций . В Республике Беларусь к данному антимикробному препарату чувствительны 84,8% госпитальных изо-лятов A. baumannii.

Сульбактам обладает внутренней антимикробной активностью против A. baumannii, которая не зави-сит от находящегося с ним в комбинации бета-лактамного препарата .

В экспериментальных исследованиях на животных эффективность сульбактама была сравнима с эф-фективностью карбапенемов в отношении карбапе-немчувствительных ацинетобактерий. В клиниче-ских исследованиях комбинация сульбактам/бета-лактам показала аналогичную эффективность в сравнении с карбапенемами при ВАП и сепсисе, вызванными мультирезистентными изолятами A. baumannii. Исходы лечения сепсиса, обусловленно-го мультирезистентным штаммом A. baumannii, с использованием сульбактама не отличались от ис-ходов, наблюдаемых при лечении другими анти-бактериальными препаратами сепсиса, вызванного нерезистентными A. baumannii .

При парентеральном введении концентрация суль-бактама в сыворотке крови 20–60 мг/л, в тканях – 2–16 мг/л . Оптимальным режимом дозиро-вания сульбактама является 2 г в виде 30-минутной инфузии через 6 ч или 1 г в виде 3-часовой инфу-зии через 6–8 ч. При использовании высоких доз сульбактама (3 г на одно введение) возможно раз-витие нежелательных лекарственных реакций в ви-де диареи, сыпи, поражения почек .

В результате ряда исследований установлено си-нергичное действие сульбактама с меропенемом, имипенемом, рифампицином, цефпиромом, амика-цином .

Карбапенемы. Для лечения тяжелых инфекций, вызываемых A. baumannii, могут использоваться имипенем, меропенем и дорипенем . Эртапенем не обладает активностью против Acinetobacterspp. в целом .

В связи с возрастанием числа карбапенемрези-стентных штаммов A. bauma-nnii, в том числе и в Республике Беларусь, использование карбапенем-ных антибиотиков для лечения ацинетобактерассо-циированных инфекций в режиме монотерапии в настоящее время является нецелесообразным. Ис-ключение составляют больничные организации здравоохранения, где по данным локального мони-торинга антибиотикорезистентности госпитальных патогенов абсолютное большинство последних со-храняет чув-ствительность к карбапенемам.

В исследованиях in vitro установлено синергичное или аддитивное действие комбинаций имипенем + амикацин + колистин, дорипенем + амикацин, до-рипенем + колистин, меропенем + сульбактам, ме-ропенем + колистин ; in vivo – имипенем + тобрамицин .

Применение комбинации карбапенем + бета-лактам/сульбактам для лечения инфекций кровото-ка, вызванных мультирезистентным A. baumannii, ассоциируется с лучшими результатами лечения, чем использование монотерапии карбапенемом или сочетания карбапенем + амикацин . Однако сочетание имипенема с сульбактамом было ассо-циировано с более низкой частотой выживаемости на модели пневмонии у мышей по сравнению с комбинацией имипенем + рифампицин .

При выборе препарата из данного класса для ле-чения ацинетобактерассоциированных инфекций необходимо учитывать, что в Республике Беларусь имипенем обладает несколько большей активно-стью в отношении нозокомиальных изолятов A. baumannii в сравнении с меропенемом (44,1 и 38,6% чувствительных штаммов, соответственно). Активность дорипенема превышает активность имипенема и меропенема только лишь в отноше-нии изолятов A. baumannii, имеющих ген OXA-58, активность имипенема – в отношении OXA-23-продуцирующих штаммов A. baumannii . Од-нако в Республике Беларусь превалируют OXA-40-продуцирующие штаммы ацинетобактерий, что не позволяет говорить о преимуществах данного пре-парата перед другими представителями класса в лечении инфекций, вызываемых A. baumannii.

Аминогликозиды. Аминогликозиды часто исполь-зуются в лечении инфекций, вызываемых грамот-рицательными микроорганизмами, однако госпи-тальные изоляты A. baumannii имеют высокий уро-вень устойчивости к данному классу антибактери-альных препаратов . В Республике Беларусь к гентамицину резистентны 64,4%, к амикацину – 89% исследованных штаммов A. baumannii. Отно-сительно низкий уровень резистентности к гента-мицину вероятнее всего связан со снижением ис-пользования этого антимикробного препарата в ор-ганизациях здравоохранения на протяжении ряда последних лет.

Назначение данного класса препаратов возможно только в комбинациях с более активными в отно-шении ацинетобактерий антибиотиками на основа-нии локальных данных о чувствительности возбу-дителя.

Рифампицин. Учитывая наличие чув-ствительности у госпитальных штаммов ацинето-бактерий к рифампицину, данный препарат может добавляться к терапии инфекций, вызванных муль-тирезистентными штаммами . Ряд авторов по-казали эффективность рифампицина в режиме мо-нотерапии, а также в комбинации с имипенемом или сульбактамом . Синергизм характе-рен также для комбинации рифампицина с коли-стином . Показана эффективность рифампици-на и комбинации рифампицина с колистином при менингите, вызванном имипенемрезистентным изолятом A. baumannii .

По данным ряда исследований в процессе лечения развивается резистентность к рифампицину как при применении его в режиме монотерапии, так и в со-четании с имипенемом, однако при использовании комбинации рифампицин + колистин было показано отсутствие изменений в МПК рифампицина .

Тетрациклины. Тетрациклины (миноциклин, док-сициклин, тетрациклин) в исследованиях invitro об-ладают активностью против A. baumannii . Наибольшую активность проявляет мино-циклин (не зарегистрирован в Республике Бела-русь), который также активен в отношении изоля-тов, резистентных к другим тетрациклинам. В це-лом экспериментальные и клинические данные, ха-рактеризующие использование тетрациклинов при инфекциях, вызванных A. baumannii, крайне мало-численны . Поэтому назначение препаратов данного класса обоснованно только на основании данных антибиотикограммы при отсутствии другой альтернативы.

Полимиксины. Из пяти известных препаратов данного класса (полимиксины А-Е) для клиническо-го использования в настоящее время доступны только полимиксин В и полимиксин Е (колистин). Колистин используется в двух формах: колистин сульфат (для деконтаминации кишечника и для местного применения при инфекциях мягких тка-ней; редко для внутривенного введения) и колисти-метат натрия (для парентерального и ингаляцион-ного введения). Колистиметат натрия (неактивный предшественник колистина) обладает меньшей токсичностью и антибактериальной активностью по сравнению с колистина сульфатом .

Полимиксины обладают высокой активностью про-тив штаммов A. baumannii, включая мультирези-стентные и карбапенемрезистентные изоляты . По данным различных исследований уровень клинической эффективности колистина со-ставляет 20–83%, микробиологической 50–92% . По данным фармакокинетических ис-

следований концентрация колистина в плазме кро-ви после внутривенного введения находится в пре-делах 1–6 мг/л , в ликворе – 25% от сыворо-точной концентрации .

Вследствие плохого проникновения через гистоге-матические барьеры у пациентов с инфекциями нижних дыхательных путей полимиксины более предпочтительно назначать ингаляционно, а при лечении инфекций центральной нервной системы – интравентрикулярно или интратекально, в сочета-нии с их парентеральным введением или систем-ным использованием других антимикробных препа-ратов .

Частота развития нефротоксичности при примене-нии полимиксинов, по данным современных иссле-дований, сравнима с другими классами антибакте-риальных препаратов и составляет 0–37% . Риск развития нефротоксичности при применении полимиксинов является дозозави-сим . При этом наибольшая частота развития побочных эффектов со стороны почек наблюдалась у пациентов с предшествующим нарушением их функции, однако развивающаяся почечная недо-статочность обычно являлась обратимой .

По данным исследований in vitro отмечается синер-гизм колистина с рифампицином, имипенемом, ми-ноциклином и цефтазидимом; полимиксина В с имипенемом, меропенемом и рифампицином .

В настоящее время парентеральные формы поли-миксинов не зарегистрированы для применения в Республике Беларусь.

Тайгециклин. Тайгециклин оказывает бактериоста-тическое или бактерицидное действие на A. baumannii, не подвержен механизмам резистент-ности, характерным для тетрациклинов .

По результатам ряда исследований тайгециклин может сохранять активность в отношении миноцик-линрезистентных, имипенемрезистентных, коли-стинрезистентных, мультирезистентных штаммов A. baumannii .

Тайгециклин имеет большой объем распределения и создает высокие концентрации в тканях организ-ма, включая легочную, однако, по мнению ряда ав-торов, концентрация препарата в крови и спинно-мозговой жидкости при рекомендуемом режиме введения является субоптимальной и не обеспечи-вает достаточной антибактериальной активности . Вследствие низких концентраций препарата в моче, не рекомендуется использовать тайгециклин при ИМП .

По мнению экспертов Food and Drug Administration (США), доказана эффективность тайгециклина для лечения тяжелых интраабдоминальных инфекций, вызванных MSSA и VSE, тяжелых инфекций кожи и мягких тканей, вызванных MSSA и MRSA, внеболь-ничной пневмонии . В то же время, использование тайгециклина для лечения нозоко-миальной пневмонии (особенно ВАП) сопряжено с повышенным риском летального исхода у тяжелых пациентов. В Республике Беларусь препарат в настоящее время не зарегистрирован.

Таблица 4. Дозы антибактериальных препаратов и кратность их введенияпри лечении A. baumannii-ассоциированных инфекций

Перспективы терапии инфекций, вызываемых A. baumannii. В исследованиях in vitro описана эффек-тивность нового цефалоспорина – цефтобипрола? против Acinetobacterspp., однако данные клиниче-ских исследований отсутствуют . Активность цефтобипрола превосходит активность цефтази-дима и цефепима при отсутствии или низкой экс-прессии генов, ответственных за синтез ADC-бета-лактамаз . Британские авторы в исследовании invitro показали активность нового монобактама BAL30072 в отношении 73% CRAB при концентра-ции 1 мг/л и 89% при 8 мг/л .

В исследовании invivoс моделированием ожоговых поражений на мышах показана эффективность фо-тодинамиче-ской терапии для лечения локализо-ванных инфекций, вызванных мультирезистентны-ми A. baumannii .

Среди принципиально новых разрабатываемых препаратов потенциальной активностью против A. baumannii обладают ингибиторы эффлюксного насоса, ингибиторы ферментов биосинтеза бакте-риальных жирных кислот (FabI- и FabK-ингибиторы), ингибиторы пептидной деформилазы металлоэнзимов, антимикробные пептиды (буфо-рин II, A3-APO), ингибиторы бета-лактамаз класса D на основе бороновой кислоты . В ис-следовании invitro продемонстрирована способ-ность экспериментального препарата NAB741, со-держащего циклический полипептидный фрагмент идентичный аналогичному участку полимиксина В, повышать чувствительность Acinetobacterbaumannii к препаратам, для которых неповрежденная наруж-ная мембрана является эффективным барьером . В другом invitro исследовании была показана эффективность ванкомицина в отношении A. baumannii при использовании технологии фузоген-ных липосом для его доставки в периплазматиче-ское пространство . Описана способность ве-ществ, разрушающих биопленку (в частности, на основе 2-аминоимидазола), восстанавливать чув-ствительность мультирезистентных изолятов ацинетобактерий к антибиотикам . Обсуждается возможность разработки так называемых «антиге-нов», направленных на ингибирование генов, отве-чающих за формирование механизмов резистент-ности; активной и пассивной иммунизации . В ряде работ показана активность вытяжек и экс-трактов из растений, секретов животных в отноше-нии мультирезистентных ацинетобактерий . В частности, масло Helichrysumitalicum, ду-бильная и эллаговая кислоты значительно снижает уровень резистентности A. baumannii к антибакте-риальным препаратам за счет ингибирования эф-флюкса .

В ряде исследований были показаны лизис ацине-тобактерий invitro, а также эффективность приме-нения бактериофагов в лечении эксперименталь-ных инфекций, вызванных Acinetobacter spp., у жи-вотных .

Профилактика

Учитывая высокую резистентность Acinetobacter baumannii к антимикробным препаратам, а также способность этого микроорганизма быстро выраба-тывать механизмы устойчивости, большое значе-ние приобретает профилактика A. baumannii-ассоциированных инфекций в организации здраво-охранения, в основе которой лежат принципы и нормы инфекционного контроля.

A. baumannii способны колонизировать обычно сте-рильные объекты, выживать как в сухих, так и во влажных условиях госпитальной среды . Ко-лонизации обычно подвергаются предметы, окру-жающие больного (перья в подушках, матрацы, по-стельное белье, занавески, кровати, прикроватные столики и тумбочки, кислородные и водопроводные краны, вода, использующаяся в аппаратах ИВЛ или для назогастрального введения), а также исполь-зующиеся для ухода за ним, контроля его состоя-ния, осуществления лечебных манипуляций. Среди предметов, использующихся для ухода и осу-ществления лечебных манипуляций A. baumannii выделяется из аппаратов искусственной вентиля-ции легких и механических отсосов, также могут колонизироваться объекты, связанные с внутрисо-судистым доступом (инфузоматы, измерители дав-ления, системы для длительной гемофильтрации, сосудистые катетеры). Среди остального оборудо-вания колонизации могут подвергаться каталки для транспортировки больных, медицинские перчатки, халаты, манжетки тонометров, пикфлоуометры, пульсоксиметры, клинки ларингоскопов, система вентиляции и кондиционирования воздуха . Благодаря способности существовать во влажной среде A. baumannii контаминируют са-мые разнообразные растворы, в том числе и неко-торые дезинфектанты (фурацилин, риванол) . Предметы госпитальной среды часто контактирую-щие с руками персонала (дверные ручки, клавиату-ры компьютеров, истории болезни, столы на меди-цинских постах, раковины и даже уборочный инвен-тарь), покрытие пола также служат дополнитель-ным резервуаром A. baumannii .

Во время внутрибольничных вспышек инфекций, вызванных A. baumannii, медицинские манипуляции также могут быть связаны с распространением воз-будителя в основном за счет контаминации исполь-зуемых материалов. Такими манипуляциями могут быть гидротерапия или пульс-лаваж ран, хирурги-ческие вмешательства, катетеризация, трахеосто-мия, спинальная пункция .

Для адекватного осуществления инфекционного контроля нозокомиальных A. baumannii-ассоции-рованных инфекций необходимо постоянно под-держивать меры, направленные на предотвраще-ние передачи возбудителя от пациента к пациенту (рис. 2), так как основным резервуаром A. baumannii в стационаре являются колонизирован-ные/инфицированные пациенты .

За исключением вышеуказанных мероприятий, немаловажное значение имеет введение жестких показаний для назначения антимикробных препара-тов не входящих в первую линию антимикробной те-рапии (например, карбапенемов, цефалоспоринов и фторхинолонов IV поколения и др.), что снижает ча-стоту неадекватного назначения антибиотиков в больничной организации здравоохранения в целом и, как следствие, уровни резистентности госпиталь-ных изолятов в том числе и A. baumannii.

В целом, следует сказать, что Acinetobacter baumannii, является в настоящее время «проблем-ным» возбудителем нозокомиальных инфекций, по-ражающим преимущественно пациентов находящих-ся в тяжелом клиническом состоянии, хорошо адап-тированный к обитанию в госпитальной среде и об-ладающим высокой резистентностью к большинству антисептических и антимикробных препаратов. При назначении антибактериальной терапии, направлен-ной на A. baumannii, следует обязательно учитывать локальные данные о его чувствительности в кон-кретной организации здравоохранения, а более предпочтительно в каждом конкретном отделении.

Данная статья взята из журнала «Медицинские новости», № 5, 2011.

Acinetobacter встречается повсеместно и способна выжить на сухих поверхностях в течение месяца, увеличивая вероятность колонизации пациентов и заражения медицинского оборудования. Существует много разновидностей Acinetobacter, но A. baumannii (АВ) считают причиной приблизительно 80% инфекций.

Болезни, вызываемые Acinetobacter (АВ)

Инфекции АВ, как правило, выявляют у пациентов, госпитализированных в критическом состоянии. Уровень смертности, связанный с инфекцией АВ, составляет 19-54%.

Наиболее часто поражаются органы дыхания. Acinetobacter часто колонизирует места трахеостомы и может вызывать внебольничный бронхиолит и трахеобронхит у здоровых детей и трахеобронхит у взрослых с ослабленным иммунитетом. Приобретенные в больнице пневмонии, вызванные Acinetobacter, часто многодолевые и осложненные. Характерны вторичная бактериемия и септический шок, что предопределяет неблагоприятный прогноз.

Вид Acinetobacter может также вызывать гнойные инфекции в любой системе организма, включая легкие, мочевыводящие пути, кожу и мягкие ткани; возможна бактериемия. Редко эти микроорганизмы вызывают менингит (прежде всего после нейрохирургических процедур), целлюлит или флебит у пациентов с постоянным венозным катетером, глазные инфекции, врожденный или спровоцированный протезом клапана эндокардит, остеомиелит, септический артрит и абсцессы поджелудочной железы и печени.

Значимость выделенных изолятов из клинических образцов определить трудно,потому что они часто представляют собой колонизацию.

Факторы риска. Факторы риска развития инфекции зависят от следующих факторов -это приобретенная в больнице, внебольничная, резистентность ко многим лекарствам.

Резистентность к препарату. В настоящее время появились штаммы АВ с резистентностью ко многим лекарствам. Распространение штаммов АВ в отделениях интенсивной терапии было связано с медицинским персоналом, у которых выявлена высокая колонизация данного микроорганизма, а также с зараженным оборудованием общего использования и зараженными растворами для парентерального питания.

Лечение Acinetobacter

• Обычно, эмпирическая комбинированная лекарственная терапия при тяжелых инфекциях.

Для пациентов с установленным инородным телом (например, катетер, шов), удаление инородного тела плюс местная обработка обычно существенны. Трахеобронхит после эндотрахеальной интубации может пройти благодаря только гигиене легких. Пациенты с осложненным течением заболевания должны лечиться антибиотиками с последующей санацией.

У АВ давно регистрируется множественная резистентность к антибактериальным препаратам. Инфекция АВ, вызванная устойчивостью ко многим препаратам, может быть резистентна к >3 классам антибактериальных препаратов; некоторые изоляты являются стойкими ко всем. Возможные варианты включают карбапенем (например, меропенем, имипенем, дорипенем), ингибитор β-лактамазы/β-лактам (например, ампициллин/сульбактам), колистин или фторхинолон плюс аминогликозид, рифампицин или оба препарата. У сульбактама (ингибитор β-лактамазы) имеется свойственная ему бактерицидная активность против многих штаммов инфекции АВ данного типа. Тигециклин, антибиотик класса глицилциклинов также эффективен; однако сообщалось о пределах его эффективности и появлении резистентности во время терапии.

Инфекции легких (при среднетяжелых формах) могут реагировать на монотерапию. Раневые инфекции также можно лечить одним препаратом, например миноциклиномом. Тяжелые инфекции лечат комбинированно, как правило, имипенемом или ингибитором β-лактама/β-лактамазы в сочетании с аминогликозидами.

Чтобы предотвратить распространение возбудителя, необходимо применять меры по предотвращению контакта (ручная стирка, барьер) и соответствующие меры по проветриванию и гигиене, связанной с пациентами, колонизированными или зараженными инфекцией такого рода.

Микроорганизмы рода Acinetobacter - это плеоморфные грамотрицательные палочки, которые легко спутать с микроорганизмами рода Neisseria. Тяжелые инфекции, вызванные этими микроорганизмами, включая менингит, бактериальный эндокардит, пневмонию, бактериемию, описывают с возрастающей частотой.

Этиология

A. calcoaceticus вариант Iwoffi был описан DeBord как Mima polymorpha в 1939 г. Это один из двух хорошо известных вариантов Acinetobacter. Другим является A. calcoaceticus вариант anitratus, вначале названный Herella vaginicola. Микроорганизмы, описанные как Bacterium anitratum и B5W, могут быть обозначены синонимом Acinetobacter. Эти микроорганизмы плеоморфны, инкапсулированы, неподвижны, грамотрицательны. Они хорошо растут на простых питательных средах, образуя белые, выпуклые, гладкие колонии. Среди микробов, выросших на плотных средах, преобладают диплококковые формы; палочковидные и нитевидные варианты возбудителя чаще выявляются на жидкой среде. Видовая идентификация от энтеробактерий основывается на их отрицательной реакции с нитратами, а от представителей рода Neisseria, которых они могут напоминать по морфологии, - по их неприхотливости к питательным средам, по палочковидной форме на жидких средах и по свойственной им отрицательной оксидазной реакции.

Эпидемиология и патогенез

Микроорганизмы рода Acinetobacter распространены повсеместно. Они являются нормальными обитателями кожных покровов у 25% здоровых людей. В случаях возможного участия Acinetobacter в бактериемиях, развивающихся во время использования у больного внутривенных катетеров, основными входными воротами инфекции считаются кожные покровы. Возросшая частота вызванной Acinetobacter пневмонии, как первичной, так и развившейся в результате суперинфекции, также свидетельствует в пользу того, что дыхательные пути могут служить важными воротами инфекции. По всей вероятности, этот микроорганизм является обычным комменсалом, обладающим относительно низкой вирулентностью, который гораздо чаще обусловливает бактерионосительство, чем вызывает развитие инфекции. Создается впечатление, что болезни, вызываемые Acinetobacter, развиваются у лиц, неожиданно встречающихся с внутрибольничной грамотрицательной инфекцией. Тяжелые инфекции развиваются в условиях сниженной резистентности макроорганизма, при инструментальных вмешательствах или после длительной антимикробной терапии препаратами широкого спектра действия. Было отмечено необъяснимое повышение частоты вызванных Acinetobacter легочных инфекций поздним летом. Участие этого микроорганизма в этиологии конъюнктивитов, вагинитов и уретритов требует дальнейшего подтверждения.

Проявления

К тяжелым инфекциям, вызванным Acinetobacter, относятся менингиты, подострые и острые бактериальные эндокардиты, пневмонии, инфекции мочевых путей и бактериемия. Обычно клинические проявления и симптомы этой инфекции не отличаются от таковых при аналогичных заболеваниях, вызванных другими возбудителями. Иногда Acinetobacter может обусловливать молниеносную бактериемию с выраженной лихорадкой, сосудистым коллапсом, петехиями, массивными подкожными кровоизлияниями, которые неотличимы от менингококкемии. Гораздо чаще, однако, бактериемия ассоциируется с очевидным внедрением инфекции через венозную систему, в частности через венозные катетеры, хирургические раны или ожоговые поверхности. Она может также развиваться после инструментальных вмешательств на мочеиспускательном канале или в других областях. В клинических проявлениях таких заболеваний доминирует эндотоксемия, и прогноз их неблагоприятный.

Диагностика

Диагностика инфекции, вызванной Acinetobacter, может быть затруднена тем, что персонал лабораторий клинической бактериологии мало осведомлен об этих микроорганизмах, что приводит к неправильной интерпретации результатов исследования. Путаница, наблюдающаяся при таксономической классификации этих микроорганизмов, также не облегчает задачу. В практическом плане выделение Acinetobacter из крови, спинномозговой жидкости, мокроты, мочи или гноя должно расцениваться как имеющее клиническое значение, если нет доказательств одновременного наличия какого-либо другого возбудителя. В практическом плане обязательной является дифференциация Acinetobacter и Neisseria, так как первые устойчивы к пенициллину, а вторые - чувствительны.

Лечение

Чувствительность отдельных штаммов Acinetobacter к антибиотикам варьирует, но большинство из них подавляются гентамицином, тобрамицином, амикацином и уреидопенициллинами, такими как пиперациллин. Чувствительность к тетрациклинам непредсказуема, и большинство штаммов устойчивы к пенициллину, ампициллину, цефалоспоринам, эритромицину и левомицетину. При тяжелых системных инфекциях следует применять соответствующий антибиотик, как правило, из ряда аминогликозидов. При локализованных абсцессах, вызываемых этими микроорганизмами, необходимо применять хирургическое дренирование.

Мазок из зева берут для проведения стандартного бактериологического исследования с целью изучения микробного состава и количественного соотношения микрофлоры носоглотки. Это метод лабораторной диагностики, позволяющий выявить возбудителей инфекционно-воспалительных заболеваний верхних отделов респираторного тракта. Для определения этиологии инфекции необходимо провести бактериологическое исследование отделяемого носа и зева на микрофлору.

Специалисты направляют больных с хроническим , и в микробиологическую лабораторию, где стерильным ватным тампоном отбирают биоматериал из носа и зева и проводят его исследование. По результатам анализа специалист определяет возбудителя патологии и его чувствительность к антибиотикам.

Причины и цели взятия мазка на микрофлору из зева и носа:

• Диагностика , вызванной бета-гемолитическим стрептококком и приводящей к развитию тяжелых осложнений - гломерулонефрита, ревматизма, миокардита.
• Наличие в носоглотке золотистого стафилококка, провоцирующего образование фурункулов на коже.
• Бактериологический посев клинического материала при воспалении носоглотки проводится с целью исключения дифтерийной инфекции.
• Подозрение на менингококковую или коклюшную инфекцию, а также респираторные недуги.
• Диагностика стенозирующего , абсцессов, расположенных рядом с миндалинами, включает однократное проведение анализа.
• Лица, контактные с инфекционным больным, а также дети, поступающие в детский сад или школу, проходят профилактическое обследование с целью выявления бактерионосительства.
• Полное обследование беременных женщин включает взятие мазка из зева на микрофлору.
• Мазок из зева и носа на стафилококк с профилактической целью сдают все медицинские работники, воспитатели детских садов, повара и продавцы продуктовых магазинов.
• Мазок из зева для определения клеточного состава отделяемого. Исследуемый материал наносят на специальное предметное стекло. Под микроскопом врач-лаборант подсчитывает количество эозинофилов и прочих клеток в поле зрения. Проводится исследование для определения аллергической природы заболевания.

В баклабораторию направляют больных для исследования материала из носоглотки с целью исключения или подтверждения конкретной инфекции. В направлении указывают микроорганизм, наличие которого необходимо подтвердить или опровергнуть.

Микрофлора носоглотки

На слизистой оболочке зева и носа обитает множество микроорганизмов, составляющих нормальную микрофлору носоглотки. Исследование отделяемого горла и носа показывает качественное и количественное соотношение микробов, обитающих в данном локусе.

Типы микроорганизмов, обитающих на слизистой носоглотки у здоровых людей:

1. Бактероиды,
2. Veillonella,
3. Escherichia coli,
4. Branhamella,
5. Pseudomonas,
6. Streptococcus matans,
7. Neisseria meningitides,
8. Klebsiella pneumonia,
9. Эпидермальный стафилококк,
10. Зеленящий стрептококк,
11. Неболезнетворные нейссерии,
12. Дифтероиды,
13. Коринебактерии,
14. Candida spp.,
15. Haemophilis spp.,
16. Actinomyces spp.

При патологии в мазке из зева и носа можно обнаружить такие микроорганизмы:

• Бета-гемолитический группы А,
• S. aureus,
• Листерия,
• Branhamella catarrhalis,
• Acinetobacter baumannii,

Подготовка к анализу

Чтобы результаты анализа были максимально достоверными, необходимо правильно отобрать клинический материал. Для этого следует подготовиться.

За две недели до забора материала прекращают прием системных антибиотиков, а за 5-7 суток рекомендуют перестать использовать антибактериальные растворы, ополаскиватели, спреи и мази для местного применения. Сдавать анализ следует натощак. Перед этим запрещено чистить зубы, пить воду и жевать жвачку. В противном случае результат анализа может оказаться ложным.

Мазок из носа на эозинофилы сдают также натощак. Если человек поел, необходимо подождать как минимум два часа.

Взятие материала

Чтобы правильно взять материал из зева, пациенты откидывают голову назад и широко раскрывают рот. Специально обученный персонал лаборатории шпателем прижимает язык и собирает отделяемое глотки специальным инструментом – стерильным ватным тампоном. Затем извлекает его из полости рта и опускает в пробирку. Пробирка содержит специальный раствор, которой предотвращает гибель микробов во время транспортировки материала. Пробирку необходимо доставить в лабораторию в течение двух часов с момента забора материала. Взятие мазка из горла – процедура безболезненная, но неприятная. Прикосновение ватного тампона к слизистой глотки может спровоцировать рвотные позывы.

Чтобы взять мазок из носа, необходимо усадить пациента напротив и слегка запрокинуть ему голову. Перед анализом необходимо очистить нос от имеющейся слизи. Кожу ноздрей обрабатывают 70% спиртом. Стерильный тампон вводят поочередно сначала в один, а затем в другой носовой ход, проворачивая инструмент и плотно прикасаясь к его стенкам. Тампон быстро опускают в пробирку и направляют материал на микроскопическое и микробиологическое исследование.

Микроскопическое исследование

Исследуемый материал наносят на предметное стекло, фиксируют в пламени горелки, окрашивают по Граму и изучают под микроскопом с иммерсионным маслом. В мазке обнаруживают грамотрицательные или грамположительные палочки, кокки или коккобациллы, изучают их морфологические и тинкториальные свойства.

Микроскопические признаки бактерий - важный диагностический ориентир. Если в мазке находятся грамположительные кокки, расположенные скоплениями, напоминающими гроздья винограда, предполагают, что возбудителем патологии является стафилококк. Если кокки окрашены по Граму положительно и располагаются в мазке цепочками или парами, возможно это стрептококки; грамотрицательные кокки - нейсерии; грамотрицательные палочки с закругленными концами и светлой капсулой - клебсиеллы, мелкие грамотрицательные палочки - эшерихии, . Дальнейшее микробиологическое исследование продолжают с учетом микроскопических признаков.

Посев исследуемого материала

Каждый микроорганизм растет на своей «родной» среде с учетом рН и влажности. Среды бывают дифференциально-диагностическими, селективными, универсальными. Их основное предназначение – обеспечение питания, дыхания, роста и размножения бактериальных клеток.

Посев исследуемого материала необходимо проводить в стерильном боксе или ламинарном шкафу. Медработник должен быть одет в стерильную одежду, перчатки, маску и бахилы. Это необходимо для соблюдения стерильности в рабочей зоне. В боксе следует работать молча, аккуратно, обеспечивая личную безопасность, поскольку любой биологический материал считается подозрительным и заведомо заразным.

Мазок из носоглотки засевают на питательные среды и инкубируют в термостате. Спустя несколько суток на средах вырастают колонии, имеющие различную форму, размер и цвет.

Существуют специальные питательные среды, которые являются селективными для конкретного микроорганизма.

Материал втирают тампоном в среду на небольшой площадке размером 2 кв. см., а затем с помощью бактериологической петли штрихами рассевают по всей поверхности чашки Петри. Посевы инкубируют в термостате при определенной температуре. На следующий день посевы просматривают, учитывают количество выросших колоний и описывают их характер. Пересевают отдельные колонии на селективные питательные среды для выделения и накопления чистой культуры. Микроскопическое изучение чистой культуры позволяет определить размер и форму бактерии, наличие капсулы, жгутиков, спор, отношение микроба к окрашиванию. Идентифицируют выделенные микроорганизмы до рода и вида, при необходимости проводят фаготипирование и серотипирование.

Результат исследования

Результат исследования врачи-микробиологи выписывают на специальном бланке. Для расшифровки результата мазка из зева требуются значения показателей. Название микроорганизма состоит из двух латинских слов, обозначающих род и вид микроба. Рядом с названием указывают количество бактериальных клеток, выраженное в особых колониеобразующих единицах. После определения концентрации микроорганизма переходят к обозначению его патогенности – «флора условно-патогенная».

У здоровых людей на слизистой оболочке носоглотки живут бактерии, выполняющие защитную функцию. Они не доставляют дискомфорта и не вызывают развития воспаления. Под воздействием неблагоприятных эндогенных и экзогенных факторов количество этих микроорганизмов резко увеличивается, что приводит к развитию патологии.

В норме содержание сапрофитных и условно-патогенных микробов в носоглотке не должно превышать 10 3 – 10 4 КОЕ/мл, а патогенные бактерии должны отсутствовать. Определить патогенность микроба и расшифровать анализ может только врач, обладающий специальными навыками и знаниями. Доктор определит целесообразность и необходимость назначения больному противовоспалительных и антибактериальных препаратов.

После выявления возбудителя патологии и его идентификации до рода и вида переходят к определению его чувствительности к фагам, антибиотикам и противомикробным препаратам. Лечить заболевание горла или носа необходимо тем антибиотиком, к которому выявленный микроб максимально чувствителен.

результатов исследования мазка из зева

Варианты результатов исследования мазка из зева:

• Отрицательный результат посева на микрофлору – возбудители бактериальной или грибковой инфекции отсутствуют. В этом случае причиной патологии являются вирусы, а не бактерии или грибы.
• Положительный результат посева на микрофлору – наблюдается рост патогенных или условно-патогенных бактерий, способных вызвать острый фарингит, дифтерию, коклюш и прочие бактериальные инфекции. При росте грибковой флоры развивается кандидоз полости рта, возбудителем которого являются биологические агенты 3 группы патогенности – дрожжеподобные грибы рода Candida.

Микробиологическое исследование отделяемого зева и носа на флору позволяет определяют вид микробов и их количественное соотношение. Все патогенные и условно-патогенные микроорганизмы подлежат полной идентификации. Результат лабораторной диагностики позволяет врачу правильно назначить лечение.